Chapitre d’ouvrage

QCM

Pages 273 à 274

Citer ce chapitre


  • Bleicher-Bardeletti, F.
  • et Duclos, B.
(2017). QCM. Biochimie : 200 fiches de cours, 155 QCM, sujets de synthèse et ressources en ligne (p. 273-274). Dunod. https://stm.cairn.info/biochimie--9782100759996-page-273?lang=fr.

  • Bleicher-Bardeletti, Françoise.
  • et al.
« QCM ». Biochimie 200 fiches de cours, 155 QCM, sujets de synthèse et ressources en ligne, Dunod, 2017. p.273-274. CAIRN.INFO, stm.cairn.info/biochimie--9782100759996-page-273?lang=fr.

  • BLEICHER-BARDELETTI, Françoise
  • et DUCLOS, Bertrand,
2017. QCM. In :
  • LATRUFFE, Norbert,
  • BLEICHER-BARDELETTI, Françoise,
  • DUCLOS, Bertrand
  • et VAMECQ, Joseph,
Biochimie 200 fiches de cours, 155 QCM, sujets de synthèse et ressources en ligne. Paris : Dunod. Tout en fiches, p.273-274. URL : https://stm.cairn.info/biochimie--9782100759996-page-273?lang=fr.

Pour chaque question, cocher la (ou les) réponse(s) exacte(s) (les réponses sont au verso).13.1 Régulation transcriptionnelle
□ a. L’ADN doit être compacté dans des structures nucléosomiques stables pour que les facteurs de transcription puissent s’y lier.
□ b. L’acétylation des extrémités N-ter des histones se fait sur des résidus cystéine.
□ c. L’état de compaction de l’ADN influe sur la capacité de liaison des facteurs de régulation mais pas sur celle des facteurs généraux de la transcription.
□ d. L’acétylation des histones favorise la transcription.
□ e. La méthylation des résidus lysine des histones permet le passage de l’hétérochromatine vers l’euchromatine.13.2 Méthodes d’étude des promoteurs
□ a. Un gène rapporteur code une protéine facilement détectable et permet d’étudier l’activité d’un promoteur.
□ b. Dans la technique du gène rapporteur, on construit un vecteur contenant le promoteur d’un gène placé en aval d’un gène rapporteur.
□ c. La technique de protection à l’ADNase1 permet de visualiser les sites de fixation d’un facteur de transcription sur un promoteur.
□ d. La technique de retard de migration sur gel permet l’analyse des interactions ADN-protéine in vivo.13.3 L’épissage alternatif
□ a. De rares gènes sont à l’origine d’un épissage alternatif.
□ b. L’épissage alternatif permet un contrôle quantitatif des ARNm en activant le mécanisme de dégradation des ARNm non sens.
□ c. L’épissage alternatif résulte de l’utilisation de sites accepteurs ou donneurs faibles (c’est-à-dire s’éloignant des séquences consensus)…


Date de mise en ligne : 04/10/2023

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