L'image représente le syndrome général d'adaptation en trois phases distinctes.
1. **Phase d'alarme** : À gauche de l'image, une flèche descendante indique une perturbation initiale due à des facteurs de stress. Cette phase est marquée par une variation non physiologique perçue, où l'organisme réagit à un choc ou contre-choc. Les ressources de l'organisme sont mobilisées pour revenir à l'équilibre homéostatique. Si le choc initial est trop intense pour les capacités de contre-choc de l'organisme, cela peut entraîner la mort.
2. **Phase de résistance** : Au centre de l'image, une courbe ascendante montre que le stress initial n'est pas résolu, persistant et entraînant une mobilisation continue des ressources de l'organisme. Cette phase est caractérisée par un stress chronique non résolu, associé à une symptomatologie spécifique. L'organisme tente de revenir à l'équilibre homéostatique, mais la situation persiste.
3. **Phase d'épuisement** : À droite de l'image, une flèche descendante indique l'épuisement des ressources de l'organisme. La symptomatologie s'aggrave, contribuant à des pathologies et éventuellement au décès. Même si des symptômes apparaissent dès la phase de résistance, l'organisme peut encore revenir à des conditions d'homéostasie avec des adaptations appropriées.
L'image illustre clairement les différentes étapes de la réponse de l'organisme au stress, de la mobilisation initiale des ressources à l'épuisement final.
Syndrome général d'adaptation. 1. Phase d'alarme : La perception d'agents stresseurs d'origine environnementale, psychologique, ou biologique (choc initial) entraîne la mobilisation des ressources de l'organisme dans le but d'un retour à l'équilibre. À noter que le choc initial, s'il est d'intensité supérieure aux capacités de contre-choc de l'organisme (pointillés), peut conduire à sa mort. 2. Phase de résistance : Le stress initial n'est pas résolu, il persiste et l'organisme continue de mobiliser des ressources. Une symptomatologie liée au stress devenu chronique s'installe. 3. Phase d'épuisement : L'organisme a épuisé ses ressources, la symptomatologie s'aggrave, contribuant à des pathologies et ultimement au décès. Même en cas d'apparition de premiers symptômes (phase de résistance), il est toujours possible à l'organisme de revenir à des conditions d'homéostasie. Les adaptogènes pourront contribuer à empêcher la phase de résistance de s'installer ou de durer et/ou pourront participer à éviter la phase d
L'image représente un graphique illustrant les variations de divers neurotransmetteurs et hormones au cours de différentes phases de réponse au stress. Les phases sont étiquetées de gauche à droite comme "alarme", "résistance", et "épuisement".
- La ligne rouge en haut, étiquetée "niveau de stress", montre une augmentation progressive du stress qui culmine à la phase de résistance et diminue ensuite.
- La ligne noire, étiquetée "sérotonine", augmente initialement puis diminue après la phase de résistance.
- La ligne bleue, étiquetée "cortisol", augmente progressivement et reste élevée jusqu'à la phase d'épuisement.
- La ligne jaune, étiquetée "DHEA", augmente initialement puis diminue après la phase de résistance.
- La ligne orange, étiquetée "noradrénaline", augmente initialement puis diminue après la phase de résistance.
- La ligne verte, étiquetée "dopamine", reste relativement stable avec une légère diminution après la phase de résistance.
- La ligne violette, étiquetée "fuite magnésienne", montre une diminution progressive du magnésium à travers les différentes phases.
Les régions grises en dessous des lignes indiquent les niveaux de ces substances à travers les différentes phases de réponse au stress. Les étiquettes "médullosurrénales" et "corticosurrénales" indiquent les glandes surrénales impliquées dans la production de ces substances.
Les événements notables du SGA. À noter que les échelles sont arbitraires et les courbes sont indicatives d'un sens de variation des éléments considérés
L'image représente un schéma de la réponse adaptative à des facteurs de stress. Elle montre comment les informations sensorielles sont traitées par le cortex préfrontal et le système limbique, incluant le hippocampe et l'amygdale. Ces informations sont ensuite transmises au hypothalamus, qui joue un rôle central dans la régulation des réponses au stress.
Le hypothalamus interagit avec l'hypophyse via les hormones CRF (corticotropin-releasing factor) et ACTH (adrenocorticotropic hormone), qui activent le cortex surrénalien. Le cortex surrénalien produit des glucocorticoïdes, tels que le cortisol, qui ont divers effets sur le corps, incluant l'inhibition de la croissance (GH, IGF1), la thermogenèse (TSH), le système immunitaire et la nociception.
Simultanément, le noyau accéssoire médian (NA) et le locus coeruleus sont activés, menant à une réponse orthosympathique via la médullé surrénalienne et la libération d'adrénaline. Cette réponse affecte les organes cibles et contribue à la réponse adaptative au stress.
Le schéma illustre également les conséquences de la chronicisation du stress, où une exposition prolongée aux glucocorticoïdes et à l'adrénaline peut entraîner des effets néfastes sur le corps.
La réponse adaptative à des facteurs de stress
L'image représente un graphique illustrant l'effet d'un adaptogène sur la réponse adaptative à un stresseur. Le graphique montre la transition de l'organisme de son état d'équilibre normal (homéostasie) à un niveau accru d'équilibre dynamique (homéostasie adaptative ou hétérostasie), correspondant à un état de résistance non spécifique.
Sur l'axe des abscisses, on trouve la durée d'exposition au stresseur, allant de l'alarme à l'épuisement. Sur l'axe des ordonnées, on trouve la réaction de l'organisme, allant de l'homéostasie à la résistance.
Le graphique est divisé en trois phases principales :
1. Alarme : L'organisme détecte le facteur de stress et commence à réagir.
2. Résistance : L'organisme s'adapte et développe une résistance prolongée au stress.
3. Épuisement : La capacité de résistance de l'organisme diminue, menant à l'épuisement.
Le graphique montre également les effets protecteurs à différentes étapes, indiquant comment l'adaptogène peut aider à maintenir ou améliorer la résistance au stress. La ligne noire épaisse représente la phase de résistance prolongée, tandis que les zones grises représentent les effets protecteurs.
Le graphique inclut des annotations expliquant la diminution de la sensibilité aux facteurs de stress et l'augmentation de la résistance non spécifique aux facteurs de stress, soulignant l'importance des adaptogènes dans la gestion du stress.
Effet d'un adaptogène sur la réponse adaptative à un stresseur. Les changements adaptatifs induits font passer l'organisme de son état d'équilibre normal (homéostasie) à un niveau accru d'équilibre dynamique (homéostasie adaptative ou hétérostasie) qui correspond à un état de résistance non spécifique. D'après Panossian et al. [13]
L'image montre une vue rapprochée d'une plante avec des feuilles vertes et larges. Les feuilles sont disposées en rosette, avec des bords légèrement dentelés. La plante semble pousser dans un sol terreux, entouré de petits cailloux et de débris. Les feuilles sont de différentes tailles, certaines plus grandes et plus visibles au centre, tandis que d'autres sont plus petites et moins apparentes. La plante semble être en bonne santé, avec une couleur verte vibrante. L'arrière-plan est flou, mettant l'accent sur la plante au premier plan.
Rameau feuillé d'Erigeron floribundus (Kunth.) Sch. Bip
L'image est un graphique comparant l'effet des huiles essentielles de feuilles fraîches et sèches sur Candida albicans après 24 heures d'incubation. L'axe des abscisses représente les doses en microlitres par millilitre (µL/mL), allant de 0 à 400. L'axe des ordonnées montre le diamètre d'inhibition en centimètres (cm), allant de 0 à 3,5.
Deux courbes sont tracées :
- Une courbe bleue avec des diamants représente les feuilles fraîches.
- Une courbe rouge avec des carrés représente les feuilles sèches.
À 0 µL/mL, le diamètre d'inhibition est de 0 cm pour les deux types de feuilles.
À 50 µL/mL, le diamètre d'inhibition est de 1,3 cm pour les feuilles sèches et de 2,27 cm pour les feuilles fraîches.
À 100 µL/mL, le diamètre d'inhibition est de 2 cm pour les feuilles sèches et de 2,73 cm pour les feuilles fraîches.
À 200 µL/mL, le diamètre d'inhibition est de 2,17 cm pour les feuilles sèches et de 3,33 cm pour les feuilles fraîches.
À 400 µL/mL, le diamètre d'inhibition est de 2,2 cm pour les feuilles sèches et reste constant à 3,33 cm pour les feuilles fraîches.
Le graphique montre que les feuilles fraîches ont un effet inhibiteur plus fort que les feuilles sèches à toutes les doses testées.
Effet des huiles essentielles des feuilles (fraîches et sèches) sur Candida albicans après 24 heures d'incubation
L'image est un graphique linéaire comparant l'effet des huiles essentielles de feuilles fraîches et sèches sur Aspergillus fumigatus après 48 heures d'incubation. L'axe des x représente les doses en microlitres par millilitre (µL/mL), allant de 0 à 400. L'axe des y représente le diamètre d'inhibition en centimètres (cm), allant de 0 à 3 cm.
Deux séries de données sont présentées :
1. Les feuilles fraîches, représentées par une ligne bleue avec des diamants.
2. Les feuilles sèches, représentées par une ligne rouge avec des carrés.
Les points de données pour les feuilles fraîches sont les suivants :
- À 0 µL/mL : 0 cm
- À 50 µL/mL : 1,55 cm
- À 100 µL/mL : 1,6 cm
- À 200 µL/mL : 1,87 cm
- À 400 µL/mL : 1,93 cm
Les points de données pour les feuilles sèches sont les suivants :
- À 0 µL/mL : 0 cm
- À 50 µL/mL : 1,6 cm
- À 100 µL/mL : 1,7 cm
- À 200 µL/mL : 2,15 cm
- À 400 µL/mL : 2,8 cm
Le graphique montre que les feuilles sèches ont un effet inhibiteur plus fort que les feuilles fraîches à toutes les doses testées. Le diamètre d'inhibition augmente de manière plus significative avec les doses pour les feuilles sèches par rapport aux feuilles fraîches.
Effet des huiles essentielles des feuilles (fraîches et sèches) sur Aspergillus fumigatus après 48 heures d'incubation
L'image est un graphique comparant l'effet des huiles essentielles de feuilles fraîches et sèches sur Trichophyton mentagrophytes après 72 heures d'incubation. L'axe des x représente les doses en microlitres par millilitre (µL/mL), allant de 0 à 400. L'axe des y représente le diamètre d'inhibition en centimètres (cm), allant de 0 à 4.
Deux courbes sont tracées :
- Une courbe bleue avec des diamants représentant les feuilles fraîches.
- Une courbe rouge avec des carrés représentant les feuilles sèches.
À 0 µL/mL, le diamètre d'inhibition est de 0 cm pour les deux types de feuilles.
À 50 µL/mL, le diamètre d'inhibition est de 1,8 cm pour les feuilles fraîches et de 3,1 cm pour les feuilles sèches.
À 100 µL/mL, le diamètre d'inhibition est de 1,8 cm pour les feuilles fraîches et de 3,25 cm pour les feuilles sèches.
À 200 µL/mL, le diamètre d'inhibition est de 1,95 cm pour les feuilles fraîches et de 3,25 cm pour les feuilles sèches.
À 400 µL/mL, le diamètre d'inhibition est de 2,25 cm pour les feuilles fraîches et de 3,5 cm pour les feuilles sèches.
Le graphique montre que les feuilles sèches ont un effet inhibiteur plus fort que les feuilles fraîches à toutes les doses testées.
Effet des huiles essentielles des feuilles (fraîches et sèches) sur Trichophyton mentagrophytes après 72 heures d'incubation
The image contains four graphs labeled A, B, C, and D, each depicting a linear relationship between concentration (mg/ml) and percentage inhibition. Each graph includes a line of best fit with its corresponding equation and R-squared value.
- **Graph A**:
- Equation: y = 52.73x + 43.76
- R-squared: 0.9965
- X-axis: Concentration (mg/ml) ranging from 0 to 1.5
- Y-axis: Percentage Inhibition ranging from 0 to 150
- **Graph B**:
- Equation: y = 50.233x + 45.611
- R-squared: 0.9964
- X-axis: Concentration (mg/ml) ranging from 0 to 1.5
- Y-axis: Percentage Inhibition ranging from 0 to 150
- **Graph C**:
- Equation: y = 63.347x + 32.178
- R-squared: 0.9917
- X-axis: Concentration (mg/ml) ranging from 0 to 1.5
- Y-axis: Percentage Inhibition ranging from 0 to 150
- **Graph D**:
- Equation: y = 86.847x + 10.799
- R-squared: 0.9966
- X-axis: Concentration (mg/ml) ranging from 0 to 1.5
- Y-axis: Percentage Inhibition ranging from 0 to 150
Each graph shows data points represented by diamond shapes, indicating experimental measurements. The lines of best fit suggest a positive linear relationship between concentration and percentage inhibition for each respective graph.
The DPPH radical scavenging activity of ascorbic acid (A), leaves extract (B), barks extract (C), and kernels extract (D) (mean ± SD, N = 3)
The image consists of two main parts labeled A and B.
Part A contains three line graphs showing the effect of different concentrations of a substance (FB) on the viability and mortality of lung cancer cells (NCI-H23) over time (24 hours, 48 hours, and 72 hours). The x-axis represents the concentration of FB in micromolar (µM) ranging from 0 to 100 µM. The y-axis on the left shows the percentage of cell viability, while the y-axis on the right shows the percentage of cell mortality. Each graph has two lines: one representing viability (in diamonds) and the other representing mortality (in circles). The graphs indicate how cell viability decreases and mortality increases with higher concentrations of FB over time.
Part B consists of a series of microscopic images showing the morphology of NCI-H23 cells under different conditions. The images are arranged in a grid with two columns and three rows. The columns are labeled "CTL" (control) and "FB (IC50)," indicating the treatment conditions. The rows represent different time points: 24 hours, 48 hours, and 72 hours. Each image shows cells treated with either a control solution (DMSO) or the IC50 concentration of FB. The images reveal changes in cell morphology over time and under different treatments, with the treated cells showing noticeable differences compared to the control.
Effect of the basic alkaloid fraction of the aerial part of Fumaria agraria “BF” on the viability, mortality and morphology of lung cancer cell lines. A. Percentage of viability and mortality of NCI-H23 cells treated with a range of FB concentrations (0, 1, 5, 10, 20, 30, 40, 50 and 100 μM) as a function of time (24 h, 48 h and 72 h). B. Photograph of the morphology of the NCI-H23 cells treated with the corresponding IC50 (24 h, 48 h and 72 h), the cells were observed under a phase contrast microscope compared to the control cells treated with the same volume of DMSO (control)
The image consists of two main panels labeled A and B.
Panel A contains three graphs showing the effect of different concentrations of a substance (FB) on the viability and mortality of NCI-H460 cells over time (24 hours, 48 hours, and 72 hours). The x-axis of each graph represents the concentration of FB in micromolar (µM), ranging from 0 to 100 µM. The y-axis on the left represents cell viability percentage, while the y-axis on the right represents cell mortality percentage. Each graph shows two curves: one for viability (marked with diamonds) and one for mortality (marked with circles). Significant points are marked with asterisks.
Panel B shows a series of microscopic images of NCI-H460 cells under different conditions. The images are arranged in a grid with three rows and two columns. The rows correspond to different time points: 24 hours, 48 hours, and 72 hours. The columns compare control cells (CTL) treated with DMSO to cells treated with the corresponding IC50 concentration of FB. The images depict the morphology of the cells under a phase contrast microscope, showing differences between treated and control cells over time.
Effect of the basic alkaloid fraction of the aerial part of Fumaria agraria “BF” on the viability, mortality and morphology of lung cancer cell lines. A. Percentage of viability and mortality of NCI-H460 cells treated with a range of FB concentrations (0, 1, 5, 10, 20, 30, 40, 50 and 100 μM) as a function of time (24 h, 48 h and 72 h). B. Photograph of the morphology of the NCI-H460 cells treated with the corresponding IC50 (24 h, 48 h and 72 h), the cells were observed under a phase contrast microscope compared to the control cells treated with the same volume of DMSO (control)
L'image montre deux types de champignons différents. En haut, il y a des champignons séchés, probablement des Lentinula edodes ou shiitakés, empilés sur une surface en bois. Ces champignons ont une forme courbée avec des bords ondulés et une couleur brun foncé avec des teintes plus claires à l'intérieur. En bas, il y a un champignon frais avec une forme conique, un chapeau plat et une couleur vert clair. Ce champignon est posé sur un sol terreux avec d'autres champignons similaires en arrière-plan.
Lentinula edodes (Shiitake)
L'image montre deux vues distinctes d'un champignon Ganoderma lucidum, également connu sous le nom de Reishi. La partie supérieure de l'image présente un gros plan d'un Reishi entier, avec sa surface lisse et brillante, et une petite cuillère remplie de poudre de Reishi à côté. La partie inférieure de l'image montre plusieurs tranches de Reishi disposées sur une surface blanche, avec des baguettes posées à côté, suggérant qu'elles sont prêtes à être consommées. Les couleurs sont principalement terreuses, avec des nuances de brun et de jaune, et la texture des tranches de Reishi semble douce et légèrement fibreuse.
Ganoderma lucidum (Reishi)
Sur une table en bois, une assiette blanche contient plusieurs spécimens de Cordyceps sinensis. Ces champignons parasites ont une forme allongée et torsadée, avec des teintes allant du jaune clair au brun foncé. Les extrémités des Cordyceps sont plus claires, tandis que les parties centrales sont plus sombres. Les spécimens sont disposés de manière à ce que leurs extrémités s'étendent vers l'extérieur de l'assiette. L'arrière-plan est flou, mettant l'accent sur l'assiette et son contenu.
Cordyceps sinensis (Cordyceps)
L'image montre une vue rapprochée d'un champignon noir et rugueux, connu sous le nom d'Inonotus obliquus ou Chaga. Le champignon est fixé à un tronc d'arbre, avec une texture irrégulière et des teintes variées allant du noir au brun foncé. Le tronc de l'arbre est visible en arrière-plan, avec des zones de mousse et de petites plantes vertes autour de sa base. L'environnement semble être une forêt ou une zone boisée, avec des éléments naturels et terreux visibles autour du champignon.
Inonotus obliquus (Chaga)
L'image montre plusieurs champignons polypores versicolores (coriolus) poussant sur un tronc d'arbre. Les champignons sont de couleur rouge vif avec des nuances de brun et des bords ondulés. Ils présentent des anneaux concentriques qui leur donnent une apparence striée. Les champignons sont disposés en couches superposées, certains se chevauchant légèrement. Le tronc d'arbre sur lequel ils poussent est de couleur marron foncé et semble être en décomposition. L'arrière-plan est flou, mettant l'accent sur les champignons.
Polypore versicolor (Coriolus)
L'image montre trois champignons Coprinus comatus, également connus sous le nom de Coprin chevelu, poussant dans un sol. Le champignon au premier plan est le plus net et le plus détaillé. Il a une forme arrondie avec une surface blanche et grise, parsemée de taches brunes. Le chapeau du champignon est légèrement bombé avec des bords irréguliers. Les deux autres champignons en arrière-plan sont moins nets mais présentent une apparence similaire. Ils sont entourés de petites plantes vertes et de débris de sol, créant un environnement naturel et terreux.
Coprinus comatus (Coprin chevelu)
Descripion d'image : L'image montre un groupe de champignons poussant sur un tronc d'arbre recouvert de mousse. Les champignons sont de couleur brun orangé et ont une forme courbée et ondulée. Ils semblent pousser en grappes, avec plusieurs individus visibles dans l'image. Le tronc d'arbre est recouvert de mousse verte, ajoutant une texture douce et naturelle à la scène. L'arrière-plan est flou, mettant l'accent sur les champignons et le tronc d'arbre. L'image semble avoir été prise dans une forêt ou une zone boisée, offrant un aperçu de la beauté naturelle des champignons sauvages.
Auricularia judae (Auricularia)
The image is a graph titled "Particle Size Distribution." It displays the distribution of particle sizes in a sample. The x-axis represents the particle size in micrometers (µm), ranging from 0.1 to 3000 µm on a logarithmic scale. The y-axis on the left represents the volume percentage (%), ranging from 0 to 15%. The y-axis on the right represents an unspecified measurement ranging from 0 to 100.
Multiple colored lines represent different particle size distributions. Each line is labeled with a specific particle size range:
- Red: 250 µm
- Blue: 160 µm
- Green: 100 µm
- Purple: <63 µm
- Pink: 200 µm
- Yellow: 125 µm
- Brown: 63 µm
- Orange: 80 µm
The graph shows how the volume percentage of particles varies with size for each distribution. Most distributions peak between 100 µm and 1000 µm, indicating that the majority of particles in these samples fall within this size range. The lines show different trends, with some peaking earlier or later and at different volumes.
Particle size distribution of the Ficus carica L. leaves powder
The image contains three contour plots labeled A, B, and C, each representing different variables affecting total phenolic content (TPC). Each plot uses a color gradient to indicate varying levels of TPC, with a legend on the right side showing the range of values.
Plot A:
- Title: Infusion time = 35 min
- X-axis: Grain size (μm) ranging from 72 to 232
- Y-axis: Infusion Temperature (°C) ranging from 50 to 100
- Color gradient: Ranges from blue (low TPC) to red (high TPC)
- Contour lines indicate specific TPC values, with higher values concentrated in the upper right section of the plot
Plot B:
- Title: Grain size = 17 μm
- X-axis: Infusion Time (min) ranging from 0 to 60
- Y-axis: Infusion Temperature (°C) ranging from 50 to 100
- Color gradient: Similar to Plot A, ranging from blue to red
- Contour lines show varying TPC values, with higher values appearing at higher infusion times and temperatures
Plot C:
- Title: Infusion Temperature = 70 °C
- X-axis: Infusion Time (min) ranging from 0 to 60
- Y-axis: Grain Size (μm) ranging from 72 to 232
- Color gradient: Again, from blue to red
- Contour lines indicate TPC values, with higher values appearing at specific combinations of grain size and infusion time
Each plot visually represents how different combinations of infusion time, grain size, and infusion temperature affect the total phenolic content.
Isopleth plots for predicted response surface of total phenolic content (TPC): (a) at infusion time = 35 min, (b) at grain size = 17 μm, and (c) at infusion temperature = 70 °C
The image displays six scanning electron microscope (SEM) images of Ficus carica L. powders, showcasing different grain sizes and magnifications. The top row features three images labeled (a), (b), and (c), each depicting the structure of powder with a grain size of 115 micrometers (μm). Image (a) shows a relatively smooth and compact surface at 5000x magnification. Image (b) reveals a more detailed view with some irregularities and textures at 1500x magnification. Image (c) highlights a complex, porous structure with distinct features at 1500x magnification.
The bottom row includes three images labeled (d), (e), and (f), illustrating the structure of powder with a finer grain size of 52 micrometers (μm). Image (d) presents a detailed, layered texture at 5000x magnification. Image (e) focuses on a more intricate, layered structure at 1500x magnification, showing fine details and patterns. Image (f) displays a rough, uneven surface with pronounced features at 500x magnification, emphasizing the granular nature of the powder.
Scanning electron microscope (SEM) structure of Ficus carica L. powders: (a, b, c) powder of grain size 115 μm; (d, e, f) powder of grain size 52 μm
The image is a bar graph displaying the glutathione contents (nM/mg proteins) across various tissues (Liver, Kidney, Heart, Spleen, Testicles, Intestines) under different treatment conditions. The treatments include control (0-0), 0-Cur, Cd-0, and Cd-Cur, each represented by different colored bars: blue for 0-0, orange for 0-Cur, gray for Cd-0, and yellow for Cd-Cur.
In the liver, the 0-0 group shows the highest glutathione content, followed by 0-Cur, Cd-0, and Cd-Cur. Significant differences are indicated with symbols: *** for P ≤ 0.001 compared to the control group, and ## for significant differences within the same tissue.
For the kidney, the 0-0 group has the highest glutathione content, with a significant decrease in the other groups, especially Cd-0 and Cd-Cur, marked with *** and ###.
In the heart, the 0-0 group again shows the highest levels, with significant differences noted among the groups, particularly Cd-0 and Cd-Cur, indicated by *** and ###.
The spleen shows a similar pattern, with the 0-0 group having the highest glutathione content, followed by 0-Cur, Cd-0, and Cd-Cur, with significant differences marked by *** and ###.
In the testicles, the 0-0 group has the highest glutathione content, with significant differences among the groups, especially Cd-0 and Cd-Cur, indicated by *** and ###.
For the intestines, the 0-0 group shows the highest glutathione content, with significant differences among the groups, particularly Cd-0 and Cd-Cur, marked by * and ###.
Overall, the graph illustrates the impact of different treatments on glutathione levels across various tissues, highlighting significant differences with statistical markers.
Tissue glutathione contents (nM/mg proteins) in control (0-0) and treated groups (0-Cur, Cd-0, and Cd-Cur) after 30 days of treatment (values represent the mean ± SM of 10 animals)
*P ≤ 0.05, ***P ≤ 0.001: Significantly difference from control (0-0) group
The image is a bar graph comparing hepatic (liver) and renal (kidney) malondialdehyde (MDA) contents across four different groups: control (0-0), treated with curcumin (0-Cur), cadmium exposure (Cd-0), and cadmium exposure with curcumin treatment (Cd-Cur). The y-axis represents the MDA levels in nanomoles per milligram of tissue (nM/mg tissue), ranging from 0 to 160. The x-axis is divided into two sections: Liver and Kidney.
For the liver:
- The control group (0-0) is represented by a blue bar, showing MDA levels around 120 nM/mg tissue.
- The 0-Cur group (treated with curcumin) is represented by an orange bar, showing MDA levels slightly lower than the control group.
- The Cd-0 group (cadmium exposure) is represented by a gray bar, showing the highest MDA levels, around 140 nM/mg tissue, with a double asterisk indicating a significant difference from the control group (P ≤ 0.01).
- The Cd-Cur group (cadmium exposure with curcumin treatment) is represented by a yellow bar, showing MDA levels lower than the Cd-0 group but higher than the control and 0-Cur groups, with a single asterisk indicating a significant difference from the control group (P ≤ 0.05).
For the kidney:
- The control group (0-0) is represented by a blue bar, showing MDA levels around 40 nM/mg tissue.
- The 0-Cur group (treated with curcumin) is represented by an orange bar, showing MDA levels similar to the control group.
- The Cd-0 group (cadmium exposure) is represented by a gray bar, showing the highest MDA levels, around 100 nM/mg tissue, with a triple asterisk indicating a significant difference from the control group (P ≤ 0.001).
- The Cd-Cur group (cadmium exposure with curcumin treatment) is represented by a yellow bar, showing MDA levels lower than the Cd-0 group but higher than the control and 0-Cur groups, with a double dagger indicating a significant difference from the control group (P ≤ 0.01).
Error bars are present on each bar, indicating the standard mean (SM) of 10 animals. The graph visually demonstrates the impact of cadmium exposure on MDA levels in liver and kidney tissues and the potential mitigating effects of curcumin treatment.
Hepatic and renal malondialdehyde contents (nM/mg tissue) in control (0-0) and treated groups (0-Cur, Cd-0, and Cd-Cur) after 30 days of treatment (values represent the mean ± SM of 10 animals)
**P ≤ 0.01, ***P ≤ 0.001: Significantly difference from control (0-0) group
The image is a bar graph displaying the activities of glutathione peroxidase (GPX) in the liver and kidney across different experimental groups. The y-axis represents GPX activities measured in μM GSH per mg of proteins, ranging from 0 to 0.9. The x-axis categorizes the data into two main groups: liver and kidney.
For the liver:
- The blue bar (0-0) shows GPX activity around 0.8 μM GSH/mg proteins.
- The orange bar (0-Cur) shows GPX activity slightly below 0.8 μM GSH/mg proteins.
- The gray bar (Cd-0) shows significantly reduced GPX activity, around 0.5 μM GSH/mg proteins, marked with three asterisks (***), indicating a significant difference from the control group (0-0).
- The yellow bar (Cd-Cur) shows GPX activity around 0.75 μM GSH/mg proteins, marked with a single asterisk (*) and three hashes (###), indicating significant differences from the control and other groups.
For the kidney:
- The blue bar (0-0) shows GPX activity around 0.5 μM GSH/mg proteins.
- The orange bar (0-Cur) shows GPX activity slightly above 0.5 μM GSH/mg proteins.
- The gray bar (Cd-0) shows significantly reduced GPX activity, around 0.3 μM GSH/mg proteins, marked with three hashes (###), indicating a significant difference from the control group (0-0).
- The yellow bar (Cd-Cur) shows GPX activity around 0.4 μM GSH/mg proteins, marked with a single asterisk (*) and a hash (#), indicating significant differences from the control and other groups.
Error bars are present on each bar, indicating the standard mean (SM) of 10 animals per group. The graph visually represents how different treatments affect GPX activities in the liver and kidney.
Hepatic and renal glutathione peroxidase activities (μM GSH/mg proteins) in control (0-0) and treated groups (0-Cur, Cd-0, and Cd-Cur) after 30 days of treatment (values represent the mean ± SM of 10 animals)
**P ≤ 0.01, ***P ≤ 0.001: Significantly difference from control (0-0) group
The image is a bar graph comparing the glutathione S-transferase (GST) activities in hepatic (liver) and renal (kidney) tissues across four different groups of subjects. The groups are labeled as follows: 0-0 (control group), 0-Cur (curcumin-treated group), Cd-0 (cadmium-exposed group), and Cd-Cur (cadmium-exposed and curcumin-treated group).
The y-axis represents the GST activities measured in nanomoles of glutathione (GSH) per minute per milligram of protein (nM GSH/min/mg protein), ranging from 0 to 30.
For the hepatic (liver) tissue:
- The 0-0 group (blue bar) shows a GST activity around 10 nM GSH/min/mg protein.
- The 0-Cur group (orange bar) shows a slightly lower GST activity, also around 10 nM GSH/min/mg protein.
- The Cd-0 group (gray bar) exhibits a significantly higher GST activity, reaching approximately 25 nM GSH/min/mg protein, marked with three asterisks (***), indicating a highly significant difference from the control group.
- The Cd-Cur group (yellow bar) shows a GST activity around 15 nM GSH/min/mg protein, marked with a single asterisk (*) and three hash marks (###), indicating a significant difference from the control group and the cadmium-exposed group, respectively.
For the renal (kidney) tissue:
- The 0-0 group (blue bar) shows a GST activity around 10 nM GSH/min/mg protein.
- The 0-Cur group (orange bar) shows a slightly lower GST activity, also around 10 nM GSH/min/mg protein.
- The Cd-0 group (gray bar) exhibits a significantly higher GST activity, reaching approximately 20 nM GSH/min/mg protein, marked with three asterisks (***), indicating a highly significant difference from the control group.
- The Cd-Cur group (yellow bar) shows a GST activity around 15 nM GSH/min/mg protein, marked with a single asterisk (*) and three hash marks (###), indicating a significant difference from the control group and the cadmium-exposed group, respectively.
Overall, the graph indicates that cadmium exposure significantly increases GST activity in both hepatic and renal tissues, while curcumin treatment in cadmium-exposed subjects reduces GST activity compared to the cadmium-exposed group alone.
Hepatic and renal glutathione S-transferase activities (nM GSH/min/mg proteins) in control (0-0) and treated groups (0-Cur, Cd-0, and Cd-Cur) after 30 days of treatment (values represent the mean ± SM of 10 animals)
*P ≤ 0.05, ***P ≤ 0.001: Significantly difference from control (0-0) group
The image is a bar graph comparing catalase (CAT) activities in the liver and kidney across four different groups of subjects. The y-axis represents CAT activities measured in micromoles of hydrogen peroxide (μM H2O2) per minute per milligram of proteins (min/mg). The x-axis is divided into two sections: Liver and Kidney.
For the liver section:
- The first bar (blue) represents the control group (0-0) with a CAT activity around 70 μM H2O2/min/mg.
- The second bar (orange) represents the 0-Cur group, showing a similar CAT activity to the control group.
- The third bar (gray) represents the Cd-0 group, showing a significantly lower CAT activity, marked with three asterisks (***), indicating a significant difference from the control group (P ≤ 0.001).
- The fourth bar (yellow) represents the Cd-Cur group, showing a higher CAT activity than the Cd-0 group but lower than the control group, marked with a single asterisk (*), indicating a significant difference from the control group (P ≤ 0.01).
For the kidney section:
- The first bar (blue) represents the control group (0-0) with a CAT activity around 40 μM H2O2/min/mg.
- The second bar (orange) represents the 0-Cur group, showing a slightly higher CAT activity than the control group.
- The third bar (gray) represents the Cd-0 group, showing a significantly lower CAT activity, marked with three asterisks (***), indicating a significant difference from the control group (P ≤ 0.001).
- The fourth bar (yellow) represents the Cd-Cur group, showing a higher CAT activity than the Cd-0 group but lower than the control group, marked with a single asterisk (*), indicating a significant difference from the control group (P ≤ 0.01).
Error bars are present on each bar, indicating the standard mean (SM) of 10 animals in each group. The graph visually represents how different treatments affect catalase activity in the liver and kidney.
Hepatic and renal catalase activities (μM H2O2/min/mg proteins) in control (0-0) and treated groups (0-Cur, Cd-0, and Cd-Cur) after 30 days of treatment (values represent the mean ± SM of 10 animals)
**P ≤ 0.01, ***P ≤ 0.001: Significantly difference from control (0-0) group
The image displays four histological sections of a rat's liver under an optical microscope at 100x magnification. The sections are labeled as (0-0), (0-Cur), (Cd-0), and (Cd-Cur), representing different treatment conditions over a 30-day period.
- The top-left section, labeled (0-0), shows a dense, uniform red staining indicative of healthy liver tissue with no visible signs of degeneration.
- The bottom-left section, labeled (0-Cur), also exhibits a similar dense, uniform red staining, suggesting healthy liver tissue under a different treatment condition.
- The top-right section, labeled (Cd-0), displays a more heterogeneous appearance with blue and green hues. There is a noticeable area with vacuolar and granular degeneration, highlighted by an arrow, indicating tissue damage.
- The bottom-right section, labeled (Cd-Cur), shows a mix of red and blue staining, suggesting some degree of cellular damage or altered tissue structure compared to the control sections.
Overall, the image illustrates the histological differences in liver tissue under various treatment conditions, highlighting the effects of treatments on liver health.
Histological sections of the rat's liver in control (0-0) and treated rats (0-Cur, Cd-0, and Cd-Cur) after 30 days of treatment. Optic microscopy (×100)
(vacuolar and granular degeneration)
The image displays four histological sections of rat kidneys under different treatment conditions, observed under an optical microscope at 100x magnification. The sections are labeled as (0-0), (Cd-0), (0-Cur), and (Cd-Cur).
1. The top-left section, labeled (0-0), shows a red-stained tissue with a relatively uniform and healthy appearance. The structure appears intact with clear, well-defined tubular formations.
2. The top-right section, labeled (Cd-0), exhibits a different staining pattern, predominantly blue and green. This section shows signs of damage, with irregular and disrupted tubular structures. An arrow points to a specific area indicating notable damage or abnormality.
3. The bottom-left section, labeled (0-Cur), resembles the (0-0) section in its red staining but appears slightly less uniform. There are some visible disruptions and less defined tubular structures compared to the control.
4. The bottom-right section, labeled (Cd-Cur), also shows red staining similar to the (0-0) and (0-Cur) sections. The tissue structure appears more intact than the (Cd-0) section but shows some signs of damage or irregularities compared to the control.
Overall, the image illustrates the varying degrees of kidney tubular structure damage under different treatment conditions.
Histological sections of the rat's kidney in control (0-0) and treated rats (0-Cur, Cd-0, and Cd-Cur) after 30 days of treatment. Optic microscopy (×100)
(Tubular structure damage)
L'image représente une illustration botanique détaillée de la Centaurea benedicta (L.), également connue sous le nom de Benediktenktraut. La plante est représentée avec ses différentes parties anatomiques étiquetées. Les parties visibles incluent les fleurs, les feuilles, les tiges, les bourgeons, les graines et les racines. Les fleurs sont représentées en différentes étapes de leur développement, allant des bourgeons fermés aux fleurs épanouies. Les feuilles sont grandes et lobées, attachées aux tiges par des pétioles. Les racines sont représentées en train de s'étendre dans le sol. L'illustration met en évidence les structures fines et complexes des parties reproductives de la plante, telles que les graines et les étamines. L'ensemble de l'image offre une vue complète de l'anatomie de la Centaurea benedicta, utile pour l'étude botanique.
Centaurea benedicta (L.) (Benediktenktraut, 1850)
L'image représente une illustration en noir et blanc d'une plante appelée Heracleum sphondylium L. La plante est représentée avec un tronc central robuste et plusieurs branches. Les feuilles sont grandes et lobées, avec des bords dentelés. Certaines feuilles sont attachées directement au tronc, tandis que d'autres poussent sur les branches. Les fleurs sont disposées en ombelles complexes, avec de nombreuses petites fleurs regroupées en grappes. Les ombelles sont positionnées au sommet des branches. À la base de la plante, il y a une partie qui semble être un bulbe ou une racine. L'illustration met en évidence les détails botaniques de la plante, y compris les structures des fleurs et des feuilles.
Heracleum sphondylium L., dessin
L'image représente une plante avec des feuilles distinctes. La plante est composée d'une tige centrale à partir de laquelle plusieurs feuilles s'étendent. Les feuilles sont de forme variable, certaines étant plus grandes et plus larges avec des bords dentelés, tandis que d'autres sont plus petites et plus pointues. Les feuilles sont disposées de manière alternée le long de la tige. Certaines feuilles sont orientées vers le haut, tandis que d'autres pendent vers le bas. La plante semble être en bonne santé, avec des feuilles bien définies et des contours nets. L'arrière-plan est simple et neutre, permettant de se concentrer uniquement sur la plante.
Abelmoschus esculentus (L.) Moench
